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液基细胞薄层涂片与宫颈涂片在早期子宫颈癌筛查中的临床应用

| 来源:网友投稿

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1 资料与方法

1.1 一般资料

将2013年7月-2015年3月在笔者所在医院实施宫颈癌筛查的186例女性纳入本研究,年龄25~57岁,平均(37.2±8.2)岁;婚姻状况:49例未婚,137例已婚;孕次:72例≤1次,114例≥2次。排除标准:子宫切除患者;月经期妇女;有宫颈疾病治疗史者;妊娠期妇女;哺乳期妇女;有盆腔放射治疗史者;诊断期间有避孕药使用史者。按照检查方式的不同将本组患者分为液基细胞薄层涂片组(n=93)与宫颈涂片组(n=93),两组患者的年龄、孕次等方面比较差异均无统计学意义(P>0.05),具有可比性,不会影响检验结果。

1.2 筛查方法

1.2.1 液基细胞薄层涂片组 对于本组患者,采用液基细胞学法进行检查,将子宫颈外口充分暴露,使用无菌棉球擦拭表面分泌物[2],使用专用毛刷于宫颈口位置顺时针旋转5~8周,取鳞状细胞与柱状细胞交接位置的脱落细胞,完成后将毛刷置于专用的细胞营养液之中,搅拌毛刷,采用过滤膜分离法取上皮细胞。采用笔者所在医院的液基细胞超薄制片机制为薄层细胞,使用95%的乙醇进行固定处理,固定时间为15 min,采用HE染色处理法,放置于光学显微镜下检查,观察有无滴虫、炎症细胞、红细胞、念珠菌,若出现病变,则确定为阳性[3]。

1.2.2 宫颈涂片法 将患者子宫颈外口充分暴露,使用无菌棉球擦拭,取样,涂抹于载玻片上,使用95%的乙醇进行固定,固定时间为15 min,采用巴氏染色法进行处理,在显微镜下观察,诊断方式参照巴氏分类法,Ⅰ级正常、Ⅱ级炎症、Ⅲ级可疑癌、Ⅳ级高度可疑癌、Ⅴ级确定为癌,细胞学检查阳性≥Ⅲ级。

对于液基细胞薄层涂片组阳性患者,分别采用相关的检验方法后再采用阴道镜活检法,子宫颈处理方式同上,使用3%的醋酸溶解涂抹于宫颈口1 min,采用碘溶液试验法进行判断,根据图象异常情况选择活检位置,使用10%的甲醛溶液固定标本。诊断结果包括浸润癌、早期浸润癌、炎症、正常、宫颈上皮内瘤变几种类型。

1.3 观察指标

对比两组阳性检出情况,并将检测结果与阴道镜活检法进行对比。

1.4 统计学处理

采用SPSS 20.0软件对所得数据进行统计分析,计数资料以率(%)表示,比较采用字2检验。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

液基细胞薄层涂片组阳性检出35例,其中32例经病理学确诊,诊断符合率为91.4%,宫颈涂片组阳性检出18例,13例经病理学确诊,诊断符合率为72.2%,上述数据组间比较差异有统计学意义(P<0.05),详见表1。

3 讨论

宫颈癌是女性群体的常见恶性肿瘤,早期诊断与发现极为重要,诊断宫颈癌的方式多种多样,巴氏涂片法成本低廉、操作简单、无创,在早期得到了广泛的应用,但是该种诊断方式容易受到制片方法、取材方式与染色水平的影响,筛查灵敏度并不理想,常常会出现假阴性结果,影响患者的治疗[4]。液基细胞薄层涂片法是一种新型检测方式,能够深入到受检者宫颈之中,在取样完成后,直接保存,弥补了传统巴氏涂片法的细胞丢失、取材不理想等问题,同时,专用的精密离心沉淀技术能够保障宫颈细胞收集率,本组研究结果显示,液基细胞薄层涂片组阳性符合率为91.4%,高于宫颈涂片组的72.2%,差异有统计学意义(P<0.05)。

液基细胞超薄制片机的工作原理是利用细胞蛋白质良性电解质属性,让细胞能够携带电荷,这既能够提升细胞收集效率,还可以有效去除不需要的白细胞、红细胞、脓液与黏液,读片速度快,检出成功率高。液基细胞超薄制片机既可以判断细胞学的诊断结果,还可以给出后续的处理方案,十分的人性化[5-8]。本组研究结果显示,液基细胞薄层涂片组CIN Ⅰ、CIN Ⅰ~Ⅲ、宫颈癌、CIN Ⅰ~Ⅲ+宫颈癌检出率分别为10.8%、17.2%、2.2%、7.5%,宫颈涂片组分别为9.7%、4.3%、1.1%、4.3%,对两组阳性检出者进行阴道镜活检,结果显示,液基细胞薄层涂片组阳性符合率为91.4%,高于宫颈涂片组的72.2%,差异有统计学意义(P<0.05)。

因此,采用液基细胞薄层涂片法筛查早期子宫颈癌效果理想,准确性高,在宫颈癌筛查中有着良好的价值,值得进行大范围推广和使用。

参考文献

[1]刘龙江,张卫民.液基细胞学联合阴道镜检查在宫颈病变诊断中的应用[J].山东医药,2008,14(11):487-488.

[2] Mackova J,Stasikova J,Kutinova L,et al.Prime/boost immunotherapy of HPV16-induced tumors with E7 protein delivered by Bordetella adenylate cyclase and modified vaccinia virus Ankara[J].Cancer Immunology Immunotherapy,2006,55(1):39-46.

[3]易江莲,田小英.液基薄层细胞学结合阴道镜检查在宫颈病变筛查中的临床意义[J].中国优生与遗传杂志,2010,12(6):254-256.

[4] Canadas M P,Sirera L D,Cirigliano V,et al.New molecular method for the detection of human papillomavirus type 16 integration.[J].Clinical Microbiology and Infection,2009,16(7):836-842.

[5]江晓红.薄层液基细胞学检查在宫颈疾病及早期宫颈癌诊断中的应用价值[J].中国妇幼保健,2012,17(34):320-322.

[6] Zusterzeel P L M,Span P N,Dijksterhuis M G K,et al.Serum vascular endothelial growth factor: a prognostic factor in cervical cancer[J].Journal of Cancer Research and Clinical Oncology,2009,135(2):283-290.

[7] Kloth J N,Oosting J,Wezel T V,et al.Combined array-comparative genomic hybridization and single-nucleotide polymorphism-loss of heterozygosity analysis reveals complex genetic alterations in cervical cancer[J].Bmc Genomics,2007,8(1):1-13.

[8] Castellsague X.Natural history and epidemiology of HPV infection and cervical cancer[J].Gynecologic Oncology,2008,110(3Suppl2):S4-S7.

(收稿日期:2015-10-02)

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